TRƯỜng đẠi học khoa học tự nhiên nguyễn Thị Hải phân lập VI khuẩn khử sulphate (srb) ĐỂ Ứng dụng trong xử LÝ NƯỚc thải axit từ hoạT ĐỘng khai thác khoáng sảN



tải về 438.76 Kb.
trang4/6
Chuyển đổi dữ liệu05.08.2016
Kích438.76 Kb.
#13693
1   2   3   4   5   6

2.1.3. Thiết bị, dụng cụ

Nghiên cứu được thực hiện tại phòng Sinh thái Vi sinh vật, Viện Vi sinh vật và Công nghệ sinh học – ĐHQGHN, sử dụng các thiết bị chuyên môn dùng trong vi sinh vật học, sinh học phân tử và hóa phân tích đạt tiêu chuẩn quốc tế.



  • Bể ổn nhiệt Jeio Tech, Hàn Quốc

  • Máy đo pH Horiba, Nhật Bản

  • Máy ly tâm Eppendoff, Đức

  • Máy ly tâm siêu tốc Beckman Counter, Mỹ

  • Máy PCR Eppendoff, Đức

  • Máy điện di ngang Nyx Technik, Mỹ

  • Máy DGGE DcodeTM universal Mutation Detection System BioRad, Mỹ

  • Máy GelDoc BioRad, Mỹ

  • Máy đo quang phổ UV – Vis (GBC instrument, Úc)

  • Kính hiển vi quang học Olympus, Nhật Bản

  • Kính hiển vi phản pha và huỳnh quang Zeiss, Đức

Ngoài ra, một số thiết bị, dụng cụ cần thiết khác được sử dụng trong quá trình nuôi cấy vi khuẩn kỵ khí như bình N2, CO2, ống nghiệm nút xoáy, pipet pasteur, bình serum, nút cao su, bình duran, màng lọc vi khuẩn…

2.2. Phương pháp nghiên cứu

2.2.1. Làm giàu và phân lập SRB

Bảng 2.1. Môi trường khoáng nước ngọt dành cho vi khuẩn khử sulfate (Widdel, Bak, 1992)

Thành phần




Nước cất

1 lít

Na2SO4

4 g

NaCl

1 g

MgCl2.6H2O

0,4 g

CaCl2.2H2O

0,15 g

KCl

0,5 g

MgSO4.7H2O

0,25 g

NH4Cl

0,25 g

KH2PO4

0,2 g

Khử trùng môi trường ở 121oC, lấy ra ở 80oC, sục khí N trong 5 phút, làm nguội, sau đó bổ sung các chất sau (đã khử trùng riêng) (ml/lít môi trường):

Hỗn hợp vitamin (bảng 2.2)

1 ml

Hỗn hợp vi lượng (bảng 2.2)

1 ml

Vitamin B1 (Thiamin)

1 ml

Vitamin B12

1 ml

Na- Lactate 1 M

10 ml

NaHCO3 1 M

30 ml

Chỉnh pH ở 7 – 7,2, sau đó san môi trường sang các bình serum hoặc ống nghiệm rồi sục khí N2 trong 30 giây, đậy bình và ống nghiệm bằng nút cao su có kẹp nhôm hay nút vặn có lỗ hở, sử dụng ngay hoặc bảo quản trong tối.

Bảng 2.2. Thành phần hỗn hợp vi lượng và vitamin (Widdel, Bak, 1992)

Hỗn hợp vi lượng




Hỗn hợp Vitamin (trong đệm phosphate)

Thành phần

mg/Lít




Thành phần

mg/100 ml đệm

HCl 25% (7,7 M)

13 ml




Na2HPO4/NaH2PO4 25 mM pH 7,1: 100 ml

FeSO4.7H2O

200




4-Aminobenzoic acid

4

H3BO3

30




D(+)- Biotin (Vitamine H)

1

MnCl2.4H2O

100




Nicotinic acid (Niacin)

10

CoCl2.6H2O

190




Calcium-D(+)- Pantothenat

5

NiCl2.6H2O

24




Pyridoxin 2 HCl

15

CuCl2.2H2O

2




Lipoic acid

1,5

ZnSO4.7H2O

144




Folic acid

4

Na2MoO4.2H2O

36




Na-2- Mercaptoethan sulfonat

25

Thêm nước cất đến 1000 ml







Làm giàu SRB. SRB trong mẫu nước thải thu thập về được làm giàu bằng cách cấy vào bình serum chứa môi trường dịch thể kỵ khí nước ngọt cho vi khuẩn khử sulfate (bảng 2.1) với tỷ lệ 10%, nuôi trong tủ ấm 30oC. Các lần cấy truyền tiếp theo được tiến hành sau mỗi 5 – 7 ngày nuôi cấy theo tỷ lệ 10% thể tích. Qua mỗi lần cấy truyền, số lượng SRB trong mẫu được tăng lên.

Phân lập SRB. Mẫu làm giàu lần 4 được dùng để phân lập SRB. Việc phân lập được tiến hành theo phương pháp pha loãng trên dãy ống thạch bán lỏng (1%) với môi trường có thành phần tương tự môi trường dùng trong làm giàu (Widdel, Bak, 1992). Ống thạch bán lỏng sau khi bổ sung nguồn vi sinh vật (10%) từ mẫu làm giàu được sục khí N2 và ủ ở tư thế đảo ngược tại 30oC trong bóng tối. Khuẩn lạc đơn phát triển trong các ống pha loãng được tách bằng pipet Pasteur và chuyển sang môi trường dịch thể.

2.2.2 Xác định điều kiện sinh trưởng tối ưu

Nhiệt độ. Các chủng SRB thuần khiết được nuôi cấy trong môi trường dịch thể kỵ khí có pH = 7, ở các nhiệt độ: 15oC, 20oC, 25oC, 30oC, 37oC. Sinh trưởng của SRB được đánh giá thông qua xác định nồng độ sulfide và sinh khối (OD600) theo thời gian (được xác định 1 lần/ngày trong 5 ngày).

pH. Các chủng SRB thuần khiết và hỗn hợp chủng SRB được nuôi cấy trong môi trường dịch thể kỵ khí có pH khác nhau: pH 4, pH 5, pH 6, pH 7, pH 8 trong tủ ấm 30oC. Sinh trưởng của SRB được đánh giá thông qua xác định nồng độ sulfide và sinh khối (OD600) theo thời gian (được xác định 1 lần/ngày trong 5 ngày).

Độ muối. Các chủng SRB thuần khiết được nuôi trong môi trường dịch thể kỵ khí ở pH 7, có độ muối khác nhau là 0, 1, 5, 10, 15, 20, 25 g/l. Sinh trưởng của SRB được đánh giá thông qua xác định nồng độ sulfide và sinh khối (OD600) theo thời gian (được xác định 1 lần/ngày trong 5 ngày).

Chất cho điện tử. Các chủng SRB thuần khiết được nuôi cấy trong môi trường dịch thể kỵ khí có bổ sung các chất cho điện tử khác nhau như lactate, acetate, methanol (10 mM mỗi loại) và sulfate (28 mM) là chất nhận điện tử duy nhất. Sinh trưởng của SRB được đánh giá sau 5 ngày nuôi cấy thông qua xác định nồng độ sulfide và sinh khối (OD600).

Chất nhận điện tử. Các chủng SRB thuần khiết được nuôi cấy trong môi trường dịch thể kỵ khí có bổ sung lactate (10 mM) là chất cho điện tử và một trong các chất nhận điện tử khác như Fe(III)-citrate (20 mM), Na-nitrate (5 mM). Dịch nuôi với sulfate (28 mM) là đối chứng dương. Sinh trưởng của SRB được đánh giá sau 5 ngày nuôi cấy thông qua xác định sinh khối (OD600).

2.2.3. Tách DNA tổng số từ mẫu môi trường và chủng thuần khiết

DNA tổng số của mẫu làm giàu và các mẫu thí nghiệm xử lý AMD trên mô hình được tách chiết theo phương pháp do Zhou và cộng sự (1996) mô tả với cải biến về nồng độ đệm phosphate (tăng từ 100 mM lên 120 mM) trong đệm tách (gồm: 100 mM Tris (pH 8);100 mM EDTA (pH 8); 120 mM đệm phosphate (Na2HPO/NaH2PO4); 1,5 M NaCl; 1% CTAB). Các bước tiến hành như sau:



  • Trộn 2 ml mẫu môi trường với 5,4 ml đệm tách DNA trong ống falcol 15 ml.

  • Phá tế bào bằng phương pháp sốc nhiệt trong nitơ lỏng và bể ổn nhiệt ở 37oC, lặp lại 5 lần.

  • Bổ sung 40 µl proteinase K (10 mg/ml), lắc ngang với tốc độ 225 vòng/phút trong 30 phút ở 37oC.

  • Thêm 600 µl SDS (20%), ủ ở 65oC trong 2 giờ, 25 phút đảo lộn đầu một lần.

  • Bổ sung với lượng tương đương PCI về thể tích, sau đó trộn đều. Ly tâm 6000 vòng/phút trong 10 phút ở nhiệt độ phòng.

  • Thu lấy phần dịch phía trên sang ống mới, lặp lại bước trên 1 lần.

  • Thu lấy phần dịch phía trên sang ống mới, bổ sung 0,6 lần thể tích isopropanol, ủ ở nhiệt độ phòng trong 1 giờ.

  • Ly tâm thu kết tủa DNA ở 12000 vòng/ phút trong 25 phút ở nhiệt độ phòng. Đổ phần dịch ở trên, rửa kết tủa với 10 ml ethanol 80%, ly tâm 12000 vòng/phút trong 15 phút ở nhiệt độ phòng.

  • Đổ ethanol, để khô ở nhiệt độ phòng.

  • Hòa tan DNA trong 50 µl nước MQ đã khử trùng, chuyển DNA sang ống eppendorf 1,5 ml và giữ ở 20oC.

DNA genome của chủng thuần khiết được tinh sạch theo phương pháp của Marmur (1961), gồm các bước như sau:

  • 1 ml dịch tế bào được ly tâm 5000 – 10 000 vòng/ phút trong 5 phút, sau đó rửa với 1 ml đệm TE (pH 8) rồi hòa tế bào trong 0,5 ml 5 mM EDTA (pH 8).

  • Thêm 50 µl lysozym (40 mg/ml), trộn đều, ủ trong bể ổn nhiệt ở 37oC trong 1 giờ.

  • Thêm 50 µl SDS (20%) và 50 µl proteinase K (4 mg/ml), trộn đều và ủ trong bể ổn nhiệt ở 55oC trong 1 giờ.

  • Thêm 400 µl PCI, trộn đều trong 1- 3 phútt, ly tâm 13000 vòng/phút ở 4oC trong 15 phút. Lặp lại bước vừa rồi thêm 1 lần.

  • Chuyển lớp dịch trong ở trên sang ống eppendorf mới. Thêm 1/10 thể tích dung dịch 3M Na-acetate (pH 5,2) và 2 lần thể tích dung dịch 2-propanol (đó để lạnh -20oC), trộn đều và giữ ở -20oC trong vòng 15 phút đến 1 giờ.

  • Ly tâm 13000 vòng/phút ở 4oC trong 15 phút, chắt phần dịch phía trên để thu kết tủa DNA.

  • Rửa DNA trong ethanol 70% (đó để lạnh 20oC) trong 1 phút, ly tâm 13 000 vòng/ phút, đổ cồn, làm khô DNA ở nhiệt độ phòng.

  • Hòa tan DNA trong 50 µl MQ vô trùng (hoặc đệm TE) và bảo quản tại 20C cho các thí nghiệm tiếp theo.

Sản phẩm DNA được kiểm tra trên gel agarose 1% trong đệm TAE tại 100 V trong thời gian 15 phút. Sau khi điện di, gel agarose được nhuộm trong dung dịch ethidium bromide (5 mg/ml) trong 15 phút, sau đó rửa nước và chụp ảnh dưới tia UV trên máy GelDoc (BioRad).

2.2.4. Phương pháp điện di biến tính DGGE



Hình 2.1. Vị trí đoạn gen 16S rDNA được sử dụng trong phân tích DGGE ở Lactobacillus plantarum (Lopez và cs, 2003).

Khuếch đại đoạn gen 16S rDNA (550 bp). Vùng V3 - V5 của gen 16S rDNA với độ dài 550 bp (hình 2.1) được khuếch đại trong phản ứng PCR sử dụng cặp mồi GM5F (CCTACGGGAGGCAGCAG) và 907R (CCGTCAATTCCTTTRAGTTT) (Muyzer và cs, 1993). Để tạo tính ổn định cho việc phân tách các trình tự DNA trên gel điện di biến tính, kẹp GC gồm 40 bp (CGCCCGCCGCGCGCGGCGGCCGGGGCGGGGGCACGGGGGG) được gắn vào đầu 5’ của mồi GM5F. “Touch-down” PCR (bảng 2.5) được sử dụng để tăng độ đặc hiệu và giảm sự hình thành các sản phẩm phụ.

Bảng 2.5. Thành phần phản ứng và chu kỳ nhiệt của PCR cho DGGE.

Thành phần phản ứng

Thể tích (µl)




Chu kỳ nhiệt của “touch-down” PCR

H2O MQ

27




Taq polymerase được đưa vào phản ứng sau bước biến tính đầu tiên ở 94C trong 1 phút khi nhiệt độ đạt 80C. Nhiệt độ gắn mồi được đặt cao hơn 10C so với nhiệt độ lý thuyết (tức là 65C). Sau mỗi chu kỳ, nhiệt độ gắn mồi giảm đi 0,5C cho tới khi đạt tới 55C, ở nhiệt độ này phản ứng tiến hành thêm 15 chu kỳ. Thời gian kéo dài chuỗi của mồi là 3 phút.

10x Taq buffer

5




BSA (3 mg/ml)

5




MgCl2 (20 mM)

4




dNTP (2,5 mM mỗi loại)

4




Mồi GM5F-GC (50 pmol/µl)

1




Mồi 907R (50 pmol/µl)

1




DNA khuôn

2




Taq polymerase (5 u/µl)

1




Tổng thể tích phản ứng

50




DGGE. Điện di được tiến hành trên gel polyacrylamide 6% với dải biến tính urea/formamid từ 30% đến 60%. Quá trình điện di được thực hiện bằng bộ điện di DcodeTM System (BioRad) trong đệm TAE, ở nhiệt độ 60C, tại 200 V, trong 3,5 giờ. Sau khi điện di, gel polyacrylamide được nhuộm trong dung dịch ethidium bromide (5 mg/ml) trong 30 phút, sau đó rửa nước và chụp ảnh dưới tia UV trên máy GelDoc (BioRad).

Cắt băng và thôi gel. Băng điện di được cắt, rửa và thôi trong nước qua đêm tại 4C. Dịch thôi DNA được dùng làm khuôn để thực hiện phản ứng PCR như chu trình nhiệt của phản ứng PCR cho DGGE (bảng 2.5) với cặp mồi GM5F (không có kẹp GC) và 907R. Sản phẩm PCR tiếp theo được tinh sạch bằng kít (Bioneer, Hàn Quốc) và giải trình tự.

2.2.5. Giải trình tự gen 16S rDNA và dựng cây phân loại

Gen 16S rDNA (1500 bp) của các chủng SRB thuần khiết được khuếch đại trong phản ứng PCR sử dụng cặp mồi 27F (AGAGTTTGATCCTGGCTCAG) và 1492R (GGTTACCTTGTTACGACT T) ( Weisburg và cs, 1991) với thành phần và chu trình phản ứng ở bảng 2.6.



Bảng 2.6. Phản ứng PCR khuyếch đại gen 16S rDNA.

Thành phần phản ứng

Thể tích (µl)




Nhiệt độ (oC)

Thời gian

Số chu kỳ

H2O MQ

13,5




94

3 phút




10x buffer

2,5




94

30 giây

35

BSA (3 mg/ml)

2,5




55

45 giây

MgCl2 (20 mM)

2




72

1,5 phút

dNTP (2,5 mM)

2




72

7 phút




Mồi 27F (50 pmol/µl)

0,5













Mồi 1492R (50 pmol/µl)

0,5













Taq polymerase (5u/µl)

0,5













DNA Khuôn

1













Tổng thể tích phản ứng

25













Gen 16S rDNA của các chủng thuần khiết (1500 bp) và sản phẩm PCR từ các băng điện di biến tính (550 bp) sau khi tinh sạch bằng kít tinh sạch sản phẩm PCR (Bioneer - Hàn Quốc) được tiến hành phản ứng đọc trình tự với ABI Prism BigDye Terminator cycle sequencing kit và đọc trình tự trên máy tự động 3110 Avant Appied Biosystems. Trình tự gen sau đó được phân tích, so sánh với trình tự 16S rDNA của các loài có liên quan hiện đã công bố trên Database DDBJ/EMBL/GenBank sử dụng phần mềm BLAST Search. Cây phân loại được dựng theo phương pháp neighbour-joining (Saitou và Nei, 1987), trong đó định dạng cây được tiến hành dựa trên 1000 phép so sánh đa chiều (Felsenstein, 1985).

2.2.6. Phân tích hóa học

2.2.6.1. Định lượng Fe(II) bằng thuốc thử phenanthrolin (DIN 38406 E1-1, 1983)

Nguyên lý: O-phenanthrolin phản ứng với Fe(II) tạo phức có màu tím đỏ trong khoảng pH 3  9, đo được ở bước sóng 510 nm. Nồng độ Fe(II) cho phép đo là 0,01  5 mg/l. Kết quả của phép đo có thể bị ảnh hưởng bởi ion Mn và Cu.

Chuẩn bị:

  • Dung dịch HCl 25% (rửa dụng cụ): Dụng cụ được rửa bằng HCl 25% và tráng bằng nước cất trước khi sử dụng

  • Dung dịch H2SO4 loãng (hạ pH): H2SO4 đặc : nước = 1 : 4 (thể tích).

  • Dung dịch ammonium acetate 5,2 M (đệm):

CH3COONH4 40 g

CH3COOH 50 ml

Nước cất đủ 100 ml


  • Dung dịch hydroxyl ammonium chloride 1,4 M (khử Fe3+ thành Fe2+)

NH2OH. HCl 10 g

Nước cất đủ 100 ml



  • Dung dịch phenanthrolin 21 mM (Tạo phức):

C12H9ClN2.H2O 0,5 g

Nước cất đủ 100 ml

(Bảo quản trong lọ tối, hạn sử dụng trong 1 tuần)


  • Dung dịch chuẩn:

FeSO4.7H2O 2,78 mg

HCl 25% 6,25 ml

Nước cất đủ 100 ml

Tiến hành:


  • Sau khi thu mẫu, lập tức hạ pH tới 1 bằng dung dịch H2SO4 loãng (1% thể tích).

  • Thêm vào 50 ml mẫu 5 ml dung dịch ammonium acetate và 2 ml dung dịch hydroxyl ammonium chloride, trộn đều bằng vortex, hỗn hợp phải có pH nằm trong khoảng 3,4 - 5,5 (tối ưu là 4,5).

  • Thêm 2 ml dung dịch phenanthrolin, trộn đều.

  • Thêm nước cho tới 100 ml, trộn đều. Giữ ở nhiệt độ phòng trong 15 phút.

  • Đo OD tại bước sóng 510 nm.

  • Đường chuẩn được tiến hành với nồng độ Fe(II) từ 5 - 50 µM.

2.2.6.2. Định lượng sulfate (Dinh và cs, 2004)

Nguyên lý: SO42- kết hợp với Ba2+ tạo kết tủa BaSO4 theo phương trình: Ba2+ + SO42- → BaSO4 kết tủa trắng. Hàm lượng sulfate được xác định thông qua hàm lượng chất kết tủa BaSO4 tạo thành.

Chuẩn bị

  • Dung dịch BaCl2 0,2 M trong HCl 0,2 M

  • Ống nghiệm thủy tinh nhỏ

  • Màng lọc nitrocellulose 0,2 µm

  • Bộ dụng cụ hút chân không


Каталог: files -> ChuaChuyenDoi
ChuaChuyenDoi -> ĐẠi học quốc gia hà NỘi trưỜng đẠi học khoa học tự nhiên nguyễn Thị Hương XÂy dựng quy trình quản lý CÁc công trìNH
ChuaChuyenDoi -> TS. NguyÔn Lai Thµnh
ChuaChuyenDoi -> Luận văn Cao học Người hướng dẫn: ts. Nguyễn Thị Hồng Vân
ChuaChuyenDoi -> 1 Một số vấn đề cơ bản về đất đai và sử dụng đất 05 1 Đất đai 05
ChuaChuyenDoi -> Lê Thị Phương XÂy dựng cơ SỞ DỮ liệu sinh học phân tử trong nhận dạng các loàI ĐỘng vật hoang dã phục vụ thực thi pháp luật và nghiên cứU
ChuaChuyenDoi -> TRƯỜng đẠi học khoa học tự nhiên nguyễn Hà Linh
ChuaChuyenDoi -> ĐÁnh giá Đa dạng di truyền một số MẪu giống lúa thu thập tại làO
ChuaChuyenDoi -> TRƯỜng đẠi học khoa học tự nhiêN
ChuaChuyenDoi -> TRƯỜng đẠi học khoa học tự nhiên nguyễn Văn Cường

tải về 438.76 Kb.

Chia sẻ với bạn bè của bạn:
1   2   3   4   5   6




Cơ sở dữ liệu được bảo vệ bởi bản quyền ©hocday.com 2024
được sử dụng cho việc quản lý

    Quê hương